DE69734194T2 - Verfahren zur bestimmung des cholesteringehalts von high-density-lipoproteinen - Google Patents

Verfahren zur bestimmung des cholesteringehalts von high-density-lipoproteinen Download PDF

Info

Publication number
DE69734194T2
DE69734194T2 DE69734194T DE69734194T DE69734194T2 DE 69734194 T2 DE69734194 T2 DE 69734194T2 DE 69734194 T DE69734194 T DE 69734194T DE 69734194 T DE69734194 T DE 69734194T DE 69734194 T2 DE69734194 T2 DE 69734194T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
cholesterol
hdl
density lipoprotein
high density
lipoproteins
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE69734194T
Other languages
English (en)
Other versions
DE69734194D1 (de
Inventor
Ltd. Hiroshi-Denka Seiken Co. MATSUI
Ltd. Yasuki-Denka Seiken Co. ITO
Ltd. Shuichi-Denka Seiken Co. OHARA
Ltd. Akira-Denka Seiken Co. FUJIWARA
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Denka Seiken Co Ltd
Original Assignee
Denka Seiken Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Denka Seiken Co Ltd filed Critical Denka Seiken Co Ltd
Application granted granted Critical
Publication of DE69734194D1 publication Critical patent/DE69734194D1/de
Publication of DE69734194T2 publication Critical patent/DE69734194T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/60Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving cholesterol
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/824Immunological separation techniques

Description

  • Technisches Gebiet
  • Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Quantifizierung von Cholesterin in hochdichtem Lipoprotein (im weiteren Verlauf auch als "HDL" bezeichnet).
  • Stand der Technik
  • Es ist bekannt, dass HDL in Zusammenhang mit der Entfernung von in Zellen gespeichertem Cholesterin steht, da dieses Cholesterin aus verschiedenen Geweben, einschließlich Blutgefäßwänden mit Arteriosklerose, aufnimmt, sodass HDL zum Ermitteln des Risikos für verschiedene Arteriosklerosen, einschließlich Herzarteriosklerose, nützlich ist und dass dessen Blutwert als Risikoindikator für den Beginn einer Arteriosklerose dient.
  • Verfahren zur Messung des Cholesterinwerts im HDL umfassen ein Verfahren, worin HDL von anderen Lipoproteinen durch Ultrazentrifugieren abgetrennt und anschließend gemessen wird, und ein Verfahren, worin das Cholesterin in HDL durch Elektrophorese abgetrennt wird, anschließend das Lipid angefärbt und die Intensität der gebildeten Farbe gemessen wird. Diese Verfahren sind jedoch komplex oder eine Anzahl der Proben kann nicht bewertet werden, sodass diese herkömmlich nicht angewandt werden.
  • Das Verfahren zur Messung des Cholesterinwerts in HDL, das herkömmlich in klinischen Tests eingesetzt wird, ist jenes Verfahren, worin ein Fällungsmittel zur Probe zugesetzt wird, um andere Lipoproteine als HDL zu koagulieren und die koagulierten Lipoproteine durch Zentrifugieren zu entfernen, wonach das Cholesterin im resultierenden Flüssigkeitsüberstand, der HDL enthält, gemessen wird. Obwohl dieses Verfahren einfacher als das Ultrazentrifugationsverfahren und das Elektrophoreseverfahren ist, ist es jedoch nicht ausreichend einfach, da es die Zugabe eines Fällungsmittels, eine anschließende Trennung und eine vergleichsweise große Probenmenge erfordert.
  • Andererseits sind Verfahren vorgeschlagen worden, worin das Cholesterin im HDL unter Verwendung von Enzymen getrennt quantifiziert wurde. Im US-Patent 4.851.335 ist beispielsweise ein Zweischrittverfahren beschrieben, bei dem andere Lipoproteine abgebaut werden, gefolgt von einem Abbau von HDL und einer Messung des auf diese Weise im zweiten Schritt freigesetzten Cholesterins. Es ist ein weiteres Verfahren bekannt, das folgende Schritte umfasst: Vorkoagulieren von anderen Lipoproteinen als HDL mit einem Antikörper und einem Polyanion, enzymatisches Umsetzen des Cholesterins im HDL alleine, Inaktivieren des Enzyms und gleichzeitiges Rücklösen der koagulierten Masse und Messen der Extinktion der resultierenden Lösung (japanische offengelegte Patentanmeldung (Kokai) Nr. 6-242110). Dieses Verfahren ist jedoch problematisch, da es eine zumindest 3-malige Zugabe von Reagenzien erfordert, sodass dieses Verfahren nur mit einer begrenzten Auswahl an Analysegeräten angewandt werden kann. Deshalb ist dieses Verfahren nicht allgemein verbreitet.
  • Andere Verfahren umfassen ein Verfahren, worin eine enzymatische Reaktion in Gegenwart von Gallensalz oder einem nichtionischen Tensid durchgeführt wird (japanische offengelegte Patentanmeldung (Kokai) Nr. 63-126498); ein in jüngerer Zeit entwickeltes Verfahren, worin das Cholesterin im HDL mittels chemisch modifizierter Cholesterinesterase und/oder Cholesterinoxidase in Gegenwart eines Clathrats, wie z.B. Cyclodextrin, spezifisch gefangen wird (japanische offengelegte Patentanmeldung (Kokai) Nr. 7-301636); und ein Verfahren, worin andere Lipoproteine als HDL in Aggregate oder Komplexe übergeführt werden und das Cholesterin im HDL anschließend mittels enzymatischer Reaktion gefangen wird (japanische offengelegte Patentanmeldungen (Kokai) Nr. 8-131197 und 8-201393). Bei diesen Verfahren kommt es jedoch bei bestimmten Proben zu anderen Ergebnissen als beim Fällungsverfahren, sodass deren Spezifitäten problematisch sind.
  • Offenbarung der Erindung
  • Ein Ziel der vorliegenden Erfindung ist die Bereitstellung eines Verfahrens zur Quantifizierung von Cholesterin in HDL, das keine komplexen Fragmentierungen und Trennungen erfordert, und wodurch das HDL-Cholesterin in Testproben, die HDL und andere Lipoproteine, wie z.B. Lipoproteine niedriger Dichte (LDL), Lipoproteine sehr niedriger Dichte (VLDL) und Chylomikron (CM), aufweisen, selektiv, einfach und genau quantifiziert werden kann.
  • Die Erfinder der vorliegenden Erfindung haben nach intensiven Forschungen festgestellt, dass es Tenside gibt, die auf HDL, jedoch im Wesentlichen nicht auf andere Lipoproteine einwirken. Die Erfinder der vorliegenden Erfindung haben zudem herausgefunden, dass HDL-Cholesterin in Testproben, die HDL und andere Lipoproteine aufweisen, selektiv, einfach und genau quantifiziert werden kann, indem das Cholesterin in anderen Lipoproteinen als hochdichtem Lipoprotein in der Testprobe selektiv gelöscht wird und anschließend das aus dem HDL stammende Cholesterin in Gegenwart des oben angeführten Tensids enzymatisch quantifiziert wird, wodurch es zur Vervollständigung der vorliegenden Erfindung kommt.
  • Die vorliegende Erfindung stellt somit ein Verfahren zur Quantifizierung von Cholesterin in hochdichtem Lipoprotein bereit, das einen ersten Schritt des Beseitigens von Cholesterin aus anderen Lipoproteinen als hochdichtem Lipoprotein in einer Testprobe und einen zweiten Schritt des Zusetzens eines Tensids, das spezifisch auf hochdichtes Lipoprotein wirkt, zum Produkt aus dem ersten Schritt sowie des enzymatischen Quantifizierens von Cholesterin in hochdichtem Lipoprotein umfasst.
  • Mit dem Verfahren der vorliegenden Erfindung kann das Cholesterin in HDL in einer Testprobe, die HDL und andere Lipoproteine, wie z.B. LDL, VLDL und CM enthält, selektiv, einfach und genau ohne komplexe Fragmentierungen und Trennungen quantifiziert werden.
  • Kurzbeschreibung der Zeichnungen
  • 1 stellt die Korrelation zwischen den Mengen an Cholesterin in HDL, die mittels eines Verfahrens eines Beispiels gemäß der vorliegenden Erfindung gemessen wer den, und den Mengen an Cholesterin in HDL, die gemäß einem herkömmlichen Fällungsverfahren gemessen werden, dar.
  • 2 stellt die Korrelation zwischen den Mengen an Cholesterin in HDL, die mittels eines Verfahrens eines anderen Beispiels gemäß der vorliegenden Erfindung gemessen werden, und den Mengen an Cholesterin in HDL, die gemäß einem herkömmlichen Fällungsverfahren gemessen werden, dar.
  • 3 stellt die Korrelation zwischen den Mengen an Cholesterin in HDL, die mittels eines Verfahrens eines weiteren Beispiels gemäß der vorliegenden Erfindung gemessen werden, und den Mengen an Cholesterin in HDL, die gemäß einem herkömmlichen Fällungsverfahren gemessen werden, dar.
  • Beste Art der Durchführung der vorliegenden Erfindung
  • In Lipoproteinen vorliegende Cholesterine umfassen Cholesterine vom Estertyp (Cholesterinester) und freies Cholesterin. In der vorliegenden Beschreibung umfasst die Bezeichnung "Cholesterin", sofern nicht anders angegeben, beide Typen.
  • Die Testprobe, die dem Verfahren der vorliegenden Erfindung unterzogen wird, kann jede beliebige Probe sein, die Lipoproteine, wie z.B. HDL, LDL, VLDL und CM enthalten kann. Beispiele für Testproben umfassen, jedoch nicht ausschließlich, Körperflüssigkeiten, wie z.B. Seren, sowie Verdünnungen davon.
  • Im ersten Schritt des erfindungsgemäßen Verfahrens wird Cholesterin aus anderen Lipoproteinen als HDL in einer Testprobe selektiv beseitigt. Die hierin verwendete Bezeichnung "beseitigen" bedeutet, dass das Cholesterin zersetzt wird und die zersetzten Produkte im anschließenden zweiten Schritt nicht mehr nachweisbar sind. Die Verfahren zur selektiven Beseitigung von Cholesterin in anderen Lipoproteinen als HDL, und zwar in LDL, VLDL, CM und dergleichen, umfassen nachstehend erläuterte Verfahren.
  • Im ersten Verfahren wird Cholesterinesterase und Cholesterinoxidase auf die Testprobe in Abwesenheit eines Tensids, das auf das HDL einwirkt, wirken gelassen, und das gebildete Wasserstoffperoxid wird entfernt. Durch die Cholesterinesterase wird das Cholesterin vom Estertyp in den Lipoproteinen hydrolysiert, um freies Cholesterin und Fettsäuren zu erhalten. Das so gebildete freie Cholesterin und das inhärent in den Lipoproteinen vorliegende freie Cholesterin werden mittels Cholesterinoxidase oxidiert, um Cholestenon und Wasserstoffperoxid zu erhalten. Das so gebildete Wasserstoffperoxid wird entfernt. Verfahren zur Entfernung von Wasserstoffperoxid umfassen ein Verfahren, worin das Wasserstoffperoxid mittels Katalase zu Wasser und Sauerstoff zersetzt wird; sowie ein Verfahren, worin eine Wasserstoffdonorverbindung auf Phenol- oder Anilinbasis, wie z.B. DAOS (N-Ethyl-N-(2-hydroxysulfopropyl)-3,5-dimethoxyanilin), das mit Wasserstoffperoxid reagiert, was ein farbloses Chinon ergibt, mit dem Wasserstoffperoxid umgesetzt wird, um das Wasserstoffperoxid in das farblose Chinon zu überführen, wobei die Verfahren zur Entfernung von Wasserstoffperoxid nicht auf diese Verfahren eingeschränkt sind.
  • Im oben erläuterten ersten Schritt kommt es zu keiner wesentlichen Umsetzung des Cholesterins in HDL, wenn der Schritt in Abwesenheit eines auf HDL wirkenden Tensids erfolgt, während das Cholesterin in den anderen Lipoproteinen wie z.B. LDL, VLDL und CM umgesetzt und beseitigt wird. Dadurch wird im nachfolgenden zweiten Schritt das Cholesterin in HDL selektiv quantifiziert.
  • Die Konzentration der Cholesterinesterase im Reaktionsgemisch des ersten Schritts kann vorzugsweise etwa 0,2 bis 1,0 U/ml und die Konzentration der Cholesterinoxidase vorzugsweise etwa 0,1 bis 0,7 U/ml betragen. Die Konzentration der Katalase kann vorzugsweise etwa 40 bis 100 U/ml und die Konzentration der Peroxidase vorzugsweise etwa 0,1 bis 1,0 U/ml betragen. Die Konzentration der Verbindung, die nach der Umsetzung mit Wasserstoffperoxid das farblose Chinon ergibt, kann vorzugsweise etwa 0,4 bis 0,8 mmol/l betragen.
  • Die Umsetzung im ersten Schritt kann vorzugsweise in einem Puffer mit einem pH von 5 bis 8 durchgeführt werden, wobei der Puffer vorzugsweise ein Phosphatpuffer, Glycinpuffer, Trispuffer oder Good-Puffer ist. Insbesondere werden Bis-Tris, PIPES, MOPSO, BES, HEPES und POPSO, die Good-Puffer sind, bevorzugt. Die Pufferkonzentration kann vorzugsweise etwa 10 bis 500 mM betragen.
  • Zur erhöhten Beseitigung von anderen Lipoproteinen als HDL kann im Reaktionsgemisch ein zweiwertiges Metallion enthalten sein. Bevorzugte Beispiele für das zweiwertige Metallion umfassen Kupferionen, Eisenionen und Magnesiumionen. Davon wird Magnesium insbesondere bevorzugt. Die Konzentration der zweiwertigen Metallionen kann vorzugsweise etwa 5 bis 200 mM betragen.
  • Im ersten Schritt kann zum Reaktionsgemisch gegebenenfalls eine Lipoproteinhydrolase zugesetzt werden. Die Zugabe dieses Enzyms wird bevorzugt, da das Cholesterin insbesondere in VLDL rasch reagiert. Die Konzentration dieses Enzyms im Reaktionsgemisch kann vorzugsweise etwa 5,0 bis 10,0 U/ml betragen.
  • Die Reaktionstemperatur im ersten Schritt kann vorzugsweise etwa 25°C bis 4°C betragen, wobei 37°C insbesondere bevorzugt wird. Die Reaktionszeit kann etwa 2 bis 10 Minuten betragen.
  • Im folgenden zweiten Schritt wird zum Reaktionsprodukt aus dem ersten Schritt ein Tensid zugesetzt, dass spezifisch auf HDL wirkt, und das Cholesterin im hochdichten Lipoprotein enzymatisch quantifiziert. Unter der Bezeichnung "spezifisch auf HDL wirkendes Tensid" wird ein Tensid verstanden, durch welches das Cholesterin in HDL aufgrund der Wirkung eines Enzyms, wie z.B. Cholesterinesterase oder Cholesterinoxidase, reagiert (das Reaktionsverhältnis beträgt nicht weniger als 70%, vorzugsweise nicht weniger als 90%), während das Cholesterin in anderen Lipoproteinen als HDL im Wesentlichen nicht reagiert (das Reaktionsverhältnis beträgt nicht mehr als 30%, vorzugsweise nicht mehr als 20%). Beispiele für ein solches Tensid umfassen Tenside mit einem Hydrophilie-Lipophilie-Wert (HLB) von 13 bis 14, insbesondere nichtionische Tenside mit einem HLB von 13 bis 14, insbesondere Polyalkylenoxidderivate. Bevorzugte Beispiele für die hierin verwendeten Derivate umfassen Kondensationsprodukte mit höheren Alkoholen, Kondensationsprodukte mit höheren Fettsäuren, Kondensationsprodukte mit höheren Fettsäureamiden, Kondensationsprodukte mit höheren Alkylaminen, Kondensationsprodukte mit höheren Alkylmercaptanen und Kondensationsprodukte mit Alkylphenolen. Unter den Polyalkylenoxidderivaten werden Polyethylenoxidderivate insbesondere bevorzugt. Der oben für HLB angeführte Bereich kann durch Vermischen einer Vielzahl von Tensiden erhalten werden, wobei ein solches Gemisch einer Vielzahl von Tensiden ebenfalls verwendet werden kann. Das Verfahren zur Ermittlung des HLB von Tensiden ist allgemein bekannt und wird beispielsweise von Hiroshi HORIGUCHI in "New Surfactants", Sankyo Shuppan (1986), beschrieben.
  • Bevorzugte spezifische Beispiele für das Tensid umfassen, jedoch nicht ausschließlich, Polyoxyethylenlaurylether, Polyoxyethylencetylether, Polyoxyethylenoleylether, Polyoxyethylenether mit einem höheren Alkohol (C4-C35), Polyoxyethylenoctylphenylether, Polyoxyethylennonylphenylether und dergleichen.
  • Obwohl die Konzentration des Tensids im zweiten Schritt keinen besonderen Einschränkungen unterliegt, kann diese, bezogen auf das Gesamtreaktionsgemisch, vorzugsweise 0,05 bis 3 Gew.-%, noch bevorzugter 0,1 bis 1,5 Gew.-%, betragen.
  • In Gegenwart des oben angeführten Tensids kann das HDL-Cholesterin in der Testprobe enzymatisch quantifiziert werden. Das bedeutet, dass im ersten Schritt der Hauptanteil des Cholesterins in einem anderen Lipoprotein als HDL beseitigt wird, und mit dem synergistischen Effekt, der zusammen mit der Reaktion im zweiten Schritt eintritt, wird das Cholesterin nur im HDL quantifiziert.
  • Das Verfahren zur enzymatischen Quantifizierung von Cholesterin an sich ist nach dem Stand der Technik allgemein bekannt. Beispielsweise kann Cholesterin, wie im ersten Schritt, durch die Bildung von Wasserstoffperoxid aus Cholesterinester und freiem Cholesterin durch die Wirkung von Cholesterinesterase und Cholesterinoxidase quantifiziert werden sowie durch Quantifizieren des gebildeten Wasserstoffperoxids. Die Quantifizierung von Wasserstoffperoxid kann durchgeführt werden, indem beispielsweise das Wasserstoffperoxid mit einer Verbindung umgesetzt wird, die ein Chinonpigment bildet, und die Menge des gebildeten Chinonpigments durch Messung der Extinktion oder dergleichen gemessen wird. Das Chinonpigment kann beispielsweise durch Umsetzung von Wasserstoffperoxid und 4-Aminoantipyrin und DAOS oder HDAOS (N-(2-Hydroxysulfopropyl)-3,5-dimethoxyanilin) gebildet werden. Das dadurch gebildete Chinonpigment weist bei 593 nm unter Verwendung von DAOS und unter Verwendung von HDAOS bei 583 nm eine maximale Extinktion auf. Obwohl die Konzentration der Verbindung, die das Chinonpigment ergibt, keinen besonderen Einschränkungen unterliegt, kann die Konzentration von 4-Aminoantipyrin beispielsweise vorzugsweise 0,1 bis 2,0 mM, noch bevorzugter 0,5 bis 1,5 mM, betragen, und die Konzentration von DAOS oder HDAOS kann vorzugsweise 0,1 bis 1,5 mM, noch bevorzugter 0,4 bis 1,0 mM, betragen. Obwohl die Konzentration der Peroxidase keinen besonderen Einschränkungen unterliegt, kann diese vorzugsweise 0,4 bis 5 U/ml im Gesamtreaktionsgemisch betragen. Die bevorzugten Reaktionsbedingungen (Reaktionstemperatur, Reaktionszeit, Puffer und pH) entsprechen den bevorzugten Reaktionsbedingungen im ersten Schritt.
  • Wenn das gebildete Wasserstoffperoxid mittels Katalase abgebaut wird, wird im zweiten Schritt ein Katalasehemmer, wie z.B. Natriumazid, verwendet, um die Katalase zu verhindern, da es erforderlich ist, die Katalase im zweiten Schritt zu hemmen.
  • Beispiele
  • Die vorliegende Erfindung wird im Folgenden konkreter anhand von Beispielen davon beschrieben. Es wird angemerkt, dass die vorliegende Erfindung nicht auf die nachstehend angeführten Beispiele begeschränkt ist. In den nachstehenden Beispielen sind alle Prozentangaben, sofern nicht anders angegeben, gewichtsbezogen.
  • Bezugsbeispiel 1
  • Unter Verwendung von Proben, die jeweils bekannte Mengen an gereinigtem HDL, LDL, VLDL und CM aufweisen, wurde das Cholesterin in jedem der Lipoproteine in Gegenwart der nichtionischen Tenside Emulgen 911 (Polyoxyethylennonylether, HLB 13,7), Emulgen B66 (Polyoxyethylenderivat, HLB 13,2) oder eines Gemischs von Emulgen B66 und Emulgen A90 (Polyoxyethylenderivat, HLB 14,5) enzymatisch quantifiziert. Diese sind alle von der KAO CORPORATION erhältlich. Dieser Vorgang wurde wie folgt ausgeführt:
    Zu einer Lösung, die in einem 50 mM PIPES-Puffer, pH 7,0, 0,5 U/ml Cholesterinesterase, 0,4 U/ml Cholesterinoxidase, 0,5 U/ml Peroxidase, 1,0 mmol/l 4-Aminoantipyrin und 0,5 mmol/l HDAOS enthielt, wurden Emulgen 911 oder Emulgen B66 zu einer Konzentration von 0,1 Gew.-% oder ein Emulgen-B66/Emulgen-A90-Gemisch (9:1) zu einer Konzentration von 1,3 Gew.-% zugesetzt. 20 Mikroliter aus jeder Probe wurden mit 2,0 ml des so hergestellten Gemischs vermischt und das resultierende Gemisch bei 37°C 10 Minuten lang umgesetzt, wonach eine Messung der Extinktion bei 600 nm folgte.
  • Daraus ergab sich, dass das Reaktionsverhältnis (und zwar das Verhältnis des quantifizierten Cholesterins im Gesamtcholesterin) etwa 95% für das Cholesterin im HDL und etwa 18 bis 22% für das Cholesterin in den anderen Lipoproteinen betrug.
  • Daraus ist ersichtlich, dass Emulgen 911, Emulgen B66 und das Emulgen-B66/Emulgen-A90-Gemisch im Umfang der Bezeichnung "spezifisch auf hochdichtes Lipoprotein wirkendes Tensid" enthalten sind.
  • Beispiel 1
  • Es wurden erste und zweite Reagenzien mit jeweils den nachstehenden Zusammensetzungen hergestellt. Erste Reagenzien
    PIPES-Puffer, pH 7,0 100 mmol/l
    HDAOS 0,7 mmol/l
    Cholesterinesterase 0,8 U/ml
    Cholesterinoxidase 0,5 U/ml
    Katalase 80 U/ml
    Magnesiumchlorid 10 mmol/l
    Zweite Reagenzien
    PIPES-Puffer, pH 7,0 100 mmol/l
    4-Aminoantipyrin 4,0 mmol/l
    Peroxidase 2,4 U/ml
    Natriumazid 0,1
    Emulgen B66 (HLB 13,2), von der KAO CORPORATION erhältlich 0,3%
  • Zu jeder dieser 4 Proben, die ein Volumen von 4 μl aufwiesen und gereinigtes HDL, LDL, VLDL und CM jeweils in einer Konzentration von 100 mg/dl enthielten, wurden 300 μl der oben beschriebenen ersten Reagenzien, die zuvor bei 37°C vorgewärmt worden waren, zugesetzt, und jedes der resultierenden Gemische wurde 5 Minuten lang bei 37°C umgesetzt. Danach wurden 100 μl der zweiten Reagenzien zu jedem Gemisch zugesetzt, und jedes der resultierenden Gemische wurde 5 Minuten lang umsetzen gelassen, wonach eine Messung der Extinktion bei 600 nm folgte. Basierend auf den gemessenen Extinktionen wurden die Mengen des Cholesterins sowie auch das Verhältnis zwischen der so ermittelten Menge und der Menge des Cholesterins in der Probe, das als Einfangverhältnis definiert ist, ermittelt.
  • Mit diesem Verfahren wird das im ersten Schritt hergestellte Wasserstoffperoxid mittels Katalase abgebaut. Andererseits bildet das im zweiten Schritt gebildete Wasserstoffperoxid ein Chinonpigment durch Umsetzung von HDAOS mit 4-Aminoantipyrin. Die Ergebnisse sind in Tabelle 1 angeführt.
  • Tabelle 1
    Figure 00100001
  • Wie aus Tabelle 1 hervorgeht, wird der Hauptanteil des Cholesterins in HDL mittels oben beschriebenen Verfahrens quantifiziert. Andererseits wird das Cholesterin in anderen Lipoproteinen als HDL im Wesentlichen nicht quantifiziert. Folglich ist klar, dass das Cholesterin in HDL mittels des erfindungsgemäßen Verfahrens selektiv quantifiziert werden kann.
  • Beispiel 2
  • Es wurde Cholesterin in HDL in den Testproben anhand des gleichen Verfahrens wie in Beispiel 1 quantifiziert, mit der Ausnahme, dass die Testproben Seren normaler Individuen waren. Andererseits wurde das HDL-Cholesterin in den gleichen Testproben mittels eines in "Clinical Tests" 23, 121 (1979), beschriebenen Fällungsverfahrens quantifiziert. Die Korrelation zwischen den durch diese Verfahren erhaltenen Ergebnissen ist in 1 dargestellt.
  • Wie in 1 angeführt, stimmten die Ergebnisse der Quantifizierung durch diese Verfahren gut überein, wodurch bewiesen werden konnte, dass das Cholesterin in HDL durch das erfindungsgemäße Verfahren genau quantifiziert werden kann.
  • Beispiel 3
  • Es wurde der gleiche Vorgang wie in Beispiel 1 wiederholt, mit der Ausnahme, dass die ersten und zweiten Reagenzien die jeweils folgenden Zusammensetzungen aufwiesen. Erste Reagenzien
    HEPES-Puffer, pH 7,0 50 mmol/l
    DAOS 1,5 mmol/l
    Cholesterinesterase 0,8 U/ml
    Cholesterinoxidase 0,5 U/ml
    Peroxidase 1,0 U/ml
    Zweite Reagenzien
    HEPES-Puffer, pH 7,0 50 mmol/l
    4-Aminoantipyrin 4,0 mmol/l
    Emulgen 911 (HLB 13,7), von der KAO CORPORATION erhältlich 0,3%
  • Durch dieses Verfahren reagiert das im ersten Schritt hergestellte Wasserstoffperoxid aufgrund der Wirkung der Peroxidase mit DAOS, um ein farbloses Chinon zu bilden. Andererseits reagiert das im zweiten Schritt gebildete Wasserstoffperoxid mit dem restlichen DAOS aus dem ersten Schritt und mit dem im zweiten Schritt zugesetzten 4-Aminoantipyrin durch Wirkung der Peroxidase, um ein Chinonpigment zu bilden. Die Ergebnisse sind in Tabelle 2 angeführt.
  • Tabelle 2
    Figure 00120001
  • Wie aus Tabelle 2 hervorgeht, wird der Hauptanteil des Cholesterins in HDL mittels oben beschriebenen Verfahrens quantifiziert. Andererseits wird das Cholesterin in anderen Lipoproteinen als HDL im Wesentlichen nicht quantifiziert. Folglich ist klar, dass das Cholesterin in HDL mittels des erfindungsgemäßen Verfahrens selektiv quantifiziert werden kann.
  • Beispiel 4
  • Es wurde Cholesterin in HDL in den Testproben anhand des gleichen Verfahrens wie in Beispiel 3 quantifiziert, mit der Ausnahme, dass die Testproben Seren normaler Individuen waren. Wie in Beispiel 2 wurde das HDL-Cholesterin in den gleichen Testproben mittels eines Fällungsverfahrens quantifiziert. Die Korrelation zwischen den durch diese Verfahren erhaltenen Ergebnissen ist in 2 dargestellt.
  • Wie in 2 angeführt, stimmten die Ergebnisse der Quantifizierung anhand dieser Verfahren gut überein, wodurch bewiesen werden konnte, dass das Cholesterin in HDL durch das erfindungsgemäße Verfahren genau quantifiziert werden kann.
  • Beispiel 5
  • Es wurden erste und zweite Reagenzien mit jeweils den nachstehenden Zusammensetzungen hergestellt. Erste Reagenzien
    BES-Puffer, pH 7,0 100 mmol/l
    HDAOS 0,7 mmol/l
    Cholesterinesterase 0,8 U/ml
    Cholesterinoxidase 0,5 U/ml
    Katalase 100 U/ml
    Magnesiumchlorid 18 mmol/l
    Zweite Reagenzien
    BES-Puffer, pH 7,0 100 mmol/l
    4-Aminoantipyrin 4,0 mmol/l
    Peroxidase 2,4 U/ml
    Natriumazid 0,1%
    Emulgen B66 (HLB 13,2), von der KAO CORPORATION erhältlich 1,17%
    Emulgen A90 (HLB 14,5), von der KAO CORPORATION erhältlich 0,13%
  • Zu jeder dieser 4 Proben, die ein Volumen von 4 μl aufwiesen und gereinigtes HDL, LDL, VLDL und CM jeweils in einer Konzentration von 100 mg/dl enthielten, wurden 300 μl der oben beschriebenen ersten Reagenzien, die zuvor bei 37°C vorgewärmt worden waren, zugesetzt, und jedes der resultierenden Gemische wurde 5 Minuten lang bei 37°C umgesetzt. Danach wurde zu jedem der Gemische 100 μl der zweiten Reagenzien zugesetzt, und jedes der resultierenden Gemische wurde 5 Minuten lang umgesetzt, wonach eine Messung der Extinktion bei 600 nm folgte. Basierend auf den gemessenen Extinktionen wurden die Mengen des Cholesterins sowie auch das Verhältnis zwischen der so ermittelten Menge und der Menge des Cholesterins in der Probe, das als Einfangverhältnis definiert ist, ermittelt.
  • Mit diesem Verfahren wird das im ersten Schritt hergestellte Wasserstoffperoxid mittels Katalase abgebaut. Andererseits bildet das im zweiten Schritt gebildete Wasserstoffperoxid ein Chinonpigment durch Umsetzung von HDAOS mit 4-Aminoantipyrin. Die Ergebnisse sind in Tabelle 3 angeführt.
  • Tabelle 3
    Figure 00140001
  • Wie aus Tabelle 3 hervorgeht, wird der Hauptanteil des Cholesterins in HDL mittels oben beschriebenen Verfahrens quantifiziert. Andererseits wird das Cholesterin in anderen Lipoproteinen als HDL im Wesentlichen nicht quantifiziert. Folglich ist klar, dass das Cholesterin in HDL mittels des erfindungsgemäßen Verfahrens selektiv quantifiziert werden kann.
  • Beispiel 6
  • Es wurde Cholesterin in HDL in den Testproben anhand des gleichen Verfahrens wie in Beispiel 5 quantifiziert, mit der Ausnahme, dass die Testproben Seren normaler Individuen waren. Andererseits wurde das HDL-Cholesterin in den gleichen Testproben mittels eines in "Clinical Tests" 23, 121 (1979), beschriebenen Fällungsverfahrens quantifiziert. Die Korrelation zwischen den durch diese Verfahren erhaltenen Ergebnissen ist in 3 dargestellt.
  • Wie in 3 angeführt, stimmten die Ergebnisse der Quantifizierung anhand dieser Verfahren gut überein, wodurch bewiesen werden konnte, dass das Cholesterin in HDL durch das erfindungsgemäße Verfahren genau quantifiziert werden kann.

Claims (6)

  1. Verfahren zur Quantifizierung von Cholesterin in hochdichtem Lipoprotein, umfassend einen ersten Schritt des Beseitigens von Cholesterin aus anderen Lipoproteinen als hochdichtem Lipoprotein in einer Testprobe und einen zweiten Schritt des Zusetzens eines Tensids, das spezifisch auf hochdichtes Lipoprotein wirkt, zum Produkt aus dem ersten Schritt sowie des enzymatischen Quantifizierens von Cholesterin in hochdichtem Lipoprotein.
  2. Verfahren nach Anspruch 1, worin der erste Schritt das Kontaktieren der Probe mit Cholesterin-Esterase und Cholesterin-Oxidase in Abwesenheit eines Tensids, das spezifisch auf hochdichtes Lipoprotein wirkt, und das Entfernen von gebildetem Wasserstoffperoxid umfasst.
  3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, worin der zweite Schritt das Zusetzen des Tensids, das spezifisch auf hochdichtes Lipoprotein wirkt, zum Produkt aus dem ersten Schritt sowie das Quantifizieren des durch die Wirkung von Cholesterin-Esterase und Cholesterin-Oxidase gebildeten Wasserstoffperoxids umfasst.
  4. Verfahren nach Anspruch 3, worin das Tensid, das spezifisch auf hochdichtes Lipoprotein wirkt, einen HLB-Wert von 13–14 aufweist.
  5. Verfahren nach Anspruch 4, worin das Tensid, das spezifisch auf hochdichtes Lipoprotein wirkt, ein Polyalkylenoxid-Derivat ist.
  6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, worin der erste Schritt bei einem pH von 5–8 durchgeführt wird.
DE69734194T 1996-12-09 1997-12-04 Verfahren zur bestimmung des cholesteringehalts von high-density-lipoproteinen Expired - Lifetime DE69734194T2 (de)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP34464996 1996-12-09
JP34464996 1996-12-09
PCT/JP1997/004442 WO1998026090A1 (fr) 1996-12-09 1997-12-04 Procede pour determiner la teneur en cholesterol des lipoproteines de haute densite

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE69734194D1 DE69734194D1 (de) 2005-10-20
DE69734194T2 true DE69734194T2 (de) 2006-06-29

Family

ID=18370907

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69734194T Expired - Lifetime DE69734194T2 (de) 1996-12-09 1997-12-04 Verfahren zur bestimmung des cholesteringehalts von high-density-lipoproteinen

Country Status (8)

Country Link
US (2) US6479249B2 (de)
EP (1) EP0887422B1 (de)
JP (1) JP3164829B2 (de)
AT (1) ATE304608T1 (de)
CA (2) CA2637805A1 (de)
DE (1) DE69734194T2 (de)
ES (1) ES2248856T3 (de)
WO (1) WO1998026090A1 (de)

Families Citing this family (42)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE400816T1 (de) * 1999-03-01 2008-07-15 Sysmex Corp Verfahren zum austesten biologischer probenkomponenten
EP1164376B1 (de) * 1999-03-24 2006-05-24 Daiichi Pure Chemicals Co., Ltd. Verfahren zur quantifizierung von cholesterin
DE60028776T2 (de) * 1999-06-21 2007-05-24 Daiichi Pure Chemicals Co. Ltd. Verfahren zum vorbehandeln von proben und zum quantifizieren von cholesterin in spezifischen lipoproteinen
CN1187609C (zh) * 1999-11-22 2005-02-02 松下电器产业株式会社 胆固醇传感器和胆固醇的定量方法
US7250269B2 (en) * 2001-01-31 2007-07-31 Asahi Kasei Pharma Corporation Composition for assaying glycoprotein
EP1477570B1 (de) * 2002-01-30 2008-01-16 DENKA SEIKEN Co., Ltd. Verfahren zur quantifizierung von cholesterin in hd-(high density)-lipoprotein und reagenszusammensetzungen
WO2004035816A1 (ja) * 2002-10-16 2004-04-29 Kyowa Medex Co., Ltd. 高密度リポ蛋白中のコレステロールの測定方法および試薬
MXPA05005708A (es) * 2002-11-27 2005-07-26 Daiichi Pure Chemicals Co Ltd Metodo para medir lipido en lipoproteina especifica.
CN101373190A (zh) * 2002-11-27 2009-02-25 积水医疗株式会社 特定脂蛋白中的脂质测定法
AU2003289081B2 (en) 2002-12-13 2009-11-19 Denka Company Limited Method of multiple quantification of cholesterol in low-density lipoproteins
US20050037504A1 (en) * 2003-07-17 2005-02-17 Dimagno Theodore John One-step assay for high-density lipoprotein cholesterol
US20050032141A1 (en) * 2003-07-17 2005-02-10 Dimagno Theodore John Dry analytical element for high-density lipoprotein cholesterol quantification
US7435577B2 (en) * 2004-02-03 2008-10-14 Polymer Technology Systems, Inc. Direct measurement of chlolesterol from low density lipoprotein with test strip
CN100564539C (zh) * 2004-12-31 2009-12-02 浙江伊利康生物技术有限公司 高密度脂蛋白中胆固醇的测定试剂及制备方法
WO2007007392A1 (ja) 2005-07-11 2007-01-18 Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 新規ポリマー及びこれを用いたコレステロール測定法
JP5129572B2 (ja) * 2005-09-30 2013-01-30 デンカ生研株式会社 生体試料中の2項目の測定対象物の同時分別定量方法
JP5534644B2 (ja) * 2005-12-09 2014-07-02 協和メデックス株式会社 レムナント様リポ蛋白中のコレステロール測定方法、試薬及びキット
GB0609494D0 (en) * 2006-05-12 2006-06-21 Oxford Biosensors Ltd HDL cholesterol sensor using specific surfactant
GB0609493D0 (en) * 2006-05-12 2006-06-21 Oxford Biosensors Ltd Cholesterol sensor
WO2008087895A1 (ja) * 2007-01-15 2008-07-24 Toyo Boseki Kabushiki Kaisha 高密度リポ蛋白中コレステロール測定方法およびその試薬
JP5448317B2 (ja) 2007-09-12 2014-03-19 デンカ生研株式会社 アジ化物によるカタラーゼの阻害に起因する測定誤差の低減方法
JP4640400B2 (ja) * 2007-09-28 2011-03-02 和光純薬工業株式会社 カタラーゼ安定化剤を用いた成分測定用試薬
EP2065708B1 (de) 2007-11-28 2014-01-01 FUJIFILM Corporation Verfahren zur Messung von hochdichtem Lipoproteincholesterol
JP5313537B2 (ja) 2008-04-10 2013-10-09 富士フイルム株式会社 高密度リポ蛋白コレステロール測定用乾式分析素子
JP5813284B2 (ja) 2009-10-26 2015-11-17 デンカ生研株式会社 ApoE−containingHDL中コレステロールの測定方法
JP5766426B2 (ja) 2010-11-10 2015-08-19 デンカ生研株式会社 レムナント様リポ蛋白コレステロールの定量方法及びそのためのキット
JP5925026B2 (ja) * 2011-04-28 2016-05-25 アークレイ株式会社 クレアチニン測定用乾式試験片及びクレアチニン測定法
US9695464B2 (en) 2011-11-11 2017-07-04 Axis-Shield As Blood sample assay method
JP2013103086A (ja) 2011-11-16 2013-05-30 Mtg:Kk 美容器
JP6054051B2 (ja) 2012-04-11 2016-12-27 デンカ生研株式会社 高密度リポ蛋白(hdl)中のコレステロール(−c)の亜分画定量方法
ES2831380T3 (es) 2013-03-15 2021-06-08 Helena Laboratories Corp Sistema y método para evaluar cantidades o tamaños de partículas lipoproteínicas de composiciones de partículas lipoproteínicas
JP6182008B2 (ja) * 2013-07-24 2017-08-16 デンカ生研株式会社 高密度リポタンパク質3中のコレステロールの定量方法及び定量試薬
CN105492623B (zh) 2013-08-30 2019-01-15 积水医疗株式会社 高密度脂蛋白中的胆固醇测定方法和该方法中使用的试剂
JP6829009B2 (ja) 2016-05-24 2021-02-10 デンカ株式会社 トリグリセリドリッチリポ蛋白中のコレステロールの定量方法及び定量試薬
JP2017060522A (ja) * 2016-12-20 2017-03-30 デンカ生研株式会社 高密度リポ蛋白(hdl)中のコレステロールの定量方法
US11407827B2 (en) * 2018-03-14 2022-08-09 Technion Research & Development Foundation Limited Prognostic biomarker in cancer
WO2019177093A1 (ja) * 2018-03-15 2019-09-19 デンカ生研株式会社 高密度リポ蛋白質中のコレステロールの定量方法
JP7134667B2 (ja) 2018-03-28 2022-09-12 デンカ株式会社 リポ蛋白コレステロールの定量方法、定量試薬及び定量キット
JP7029139B2 (ja) 2018-08-23 2022-03-03 デンカ株式会社 非アルコール性脂肪性肝炎の検出を補助する方法
CN115004033A (zh) 2020-02-04 2022-09-02 电化株式会社 辅助检测非酒精性脂肪肝炎的方法
JP7437239B2 (ja) 2020-06-02 2024-02-22 デンカ株式会社 リポ蛋白コレステロールの定量方法およびキット
JP7455674B2 (ja) 2020-06-02 2024-03-26 デンカ株式会社 キットおよび方法

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3208253A1 (de) 1982-03-08 1983-09-15 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren zur spezifischen bestimmung des cholesterins der ldl-fraktion im serum
DE3533288A1 (de) * 1985-09-18 1987-03-26 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren und reagenz zur spezifischen bestimmung von hdl-cholesterin im serum
DE3636851A1 (de) * 1986-10-29 1988-05-11 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren und reagenz zur spezifischen bestimmung des cholesterins der hdl-fraktion
US5215886A (en) * 1987-06-22 1993-06-01 Patel P Jivan HDL determination in whole blood
WO1992021015A1 (en) 1991-05-23 1992-11-26 Seman Leo J Jr METHOD FOR DETECTING LIPOPROTEIN (a) AND ASSOCIATED CHOLESTEROL
JP2653755B2 (ja) 1994-03-08 1997-09-17 協和メデックス株式会社 高密度リポ蛋白中のコレステロールの定量法
JP3107492B2 (ja) 1994-04-05 2000-11-06 国際試薬株式会社 リポ蛋白分画中の成分の定量方法
JPH08116996A (ja) * 1994-10-26 1996-05-14 Toyobo Co Ltd 血清または血漿中のhdl−コレステロールを測定する方法
JP2799835B2 (ja) 1995-01-31 1998-09-21 第一化学薬品株式会社 コレステロールの定量方法
JP3614514B2 (ja) * 1995-06-21 2005-01-26 国際試薬株式会社 高比重リポ蛋白分画中のコレステロールの定量方法及び定量用試薬キット

Also Published As

Publication number Publication date
ATE304608T1 (de) 2005-09-15
CA2246308C (en) 2008-11-18
CA2246308A1 (en) 1998-06-18
WO1998026090A1 (fr) 1998-06-18
ES2248856T3 (es) 2006-03-16
US20020001819A1 (en) 2002-01-03
JP3164829B2 (ja) 2001-05-14
DE69734194D1 (de) 2005-10-20
CA2637805A1 (en) 1998-06-18
EP0887422A1 (de) 1998-12-30
EP0887422A4 (de) 2002-10-23
US6479249B2 (en) 2002-11-12
EP0887422B1 (de) 2005-09-14
US20020192732A1 (en) 2002-12-19
US6893832B2 (en) 2005-05-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69734194T2 (de) Verfahren zur bestimmung des cholesteringehalts von high-density-lipoproteinen
DE69737108T2 (de) Methode zur quantifizierung von cholesterol in lipoproteinen geringer dichte
DE69731203T2 (de) Methode zur quantifizierung von ldl-cholesterin
DE69920937T2 (de) Verfahren zur quantifizierung von cholesterol in lipoproteinen und quantifizierungsreagenzien
EP0088420B1 (de) Verfahren zur spezifischen Bestimmung des Cholesterins der LDL-Fraktion im Serum
EP0265933B1 (de) Verfahren und Reagenz zur spezifischen Bestimmung des Cholesterins der HDL-Fraktion
DE3502200C2 (de)
EP0141343B1 (de) Verfahren zur Bestimmung der Low Density Lipoproteine (LDL) und Reagenz zu seiner Durchführung
DE69533387T2 (de) Verfahren zur bestimmung von cholesterin in high-density-lipoprotein
EP0218127B1 (de) Verfahren und Reagenz zur spezifischen Bestimmung von HDL-Cholesterin im Serum
DE60034492T2 (de) Verfahren zum vorbehandeln von proben und zum quantifizieren von cholesterin in spezifischen lipoproteinen
DE3249743C2 (de)
EP0092801B1 (de) Verfahren zur Bestimmung der Low Density Lipoproteine (LDL) und Reagenz zu seiner Durchführung
EP0186134A1 (de) Mittel zur Verbesserung des Nachweises Wasserstoffperoxid liefernder Oxidase-Reaktionen und seine Verwendung
DE60100241T2 (de) Verfahren und Reagenz zur Bestimmung von Cholesterin in Rest-Lipoproteinpartikeln (Remnante Partikel)
EP0030718A1 (de) Verfahren und Reagens zur Bestimmung von Triglyceriden
DE60318685T2 (de) Verfahren zur quantifizierung von cholesterin in hd-(high density)-lipoprotein und reagenszusammensetzungen
DE60038161T2 (de) Verfahren zum Quantifizieren von Triglyczeriden im Lipoprotein
DE2653537A1 (de) Verfahren und mittel zur bestimmung von hydroperoxiden
DE3007579C2 (de) Selektives Medium zur Isolierung von Choleravibrionen
DE3125667C2 (de) Verfahren und Mittel zum Nachweis von Wasserstoffperoxid
EP0131606B1 (de) Verfahren und reagenz zur differenzierten bestimmung von isoenzymen der alkalischen phosphatase
DE60130576T2 (de) Lipidassay-verfahren und reagenz zur verwendung darin
DE2264847A1 (de) Verfahren und reagenz zur bestimmung von cholesterin
DE3138602C2 (de)

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition